Дневник практики лаборанта заполненный по дням
Дневник производственной практики «Помощник лаборанта клинических лабораторий лечебно-профилактических учреждений и лабораторий учреждений, осуществляющих свою деятельность в целях обеспечения государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Российской Федерации»
Государственное бюджетное образовательное учреждение
«Тихоокеанский государственный медицинский университет»
Министерства здравоохранения Российской Федерации
«Помощник лаборанта клинических лабораторий лечебно-профилактических учреждений и лабораторий учреждений, осуществляющих свою деятельность в целях обеспечения государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Российской Федерации»
Группа ___________ Специальность: Медико-профилактическое дело
База практики ________________________________________________________________
Сроки прохождения практики
ГБОУ ВПО ТГМУ Минздрава России
Руководитель практики от организации
Оценка за практику ____________________________________________________
20__/ 20__ учебный год
УЧЕТ ВЫПОЛНЕННОЙ РАБОТЫ
Знакомство с основными подразделениями клинико-диагностической лаборатории. Просмотр документации КДЛ, приказов Министерства здравоохранения РФ по лабораторной службе. Изучение инструкции по технике безопасности при работе в КДЛ, отраслевого стандарта «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения, средства и режимы». Знакомство с оснащением КДЛ.
Прием, регистрация, маркировка проб мочи
Определение реакции мочи
Определение относительной плотности мочи
Заполнение бланков исследования мочи.
Качественное определение белка в моче. Проба с 20 % сульфосалициловой кислотой. Проба Геллера с азотной кислотой и реактивом Ларионовой. Проба с индикаторными экспресс-полосками. Заполнение бланков исследования.
Определение концентрации белка в моче по времени появления кольца.
Проведение унифицированного метода определения количества белка на фотоэлектроколориметре с 3% раствором сульфосалициловой кислоты. Составление калибровочного графика.
Определение концентрации белка в моче по полученной оптической плотности (экстинции) в исследуемом растворе.
Качественное определение глюкозы в моче колориметрическим методом, на анализаторе.
Определение ацетона в моче
Определение желчных пигментов в моче
Обнаружение гемоглобинурии и гематурии в моче. Определение гемоглобина на спектрофотометре. Микроскопическое исследование наличия крови с помощью индикаторных экспресс-полосок.
Ориентировочный метод исследования осадка. Приготовление нативного препарата мочи для микроскопического исследования
Микроскопическое исследование осадков щелочной мочи.
Количественные методы исследования мочи по Нечипоренко. Заполнение бланков исследования мочи. Подсчет форменных элементов осадка мочи в камере Горяева.
Выполнение пробы Зимницкого. Заполнение бланков исследования мочи по Зимницкому.
Взятие крови из пальца на общий анализ. Приготовление дезинфицирующих растворов. Приготовление 10 % раствора хлорной извести. Приготовление 0,2 %, 0,5 %, 1 %, 2,0 %, 3,0 % 5,0 % растворов хлорамина.
Дезинфекция одноразовых скарификаторов в 5 % растворе хлорамина. Дезинфекция лабораторной посуды, инструментария, инвентаря.
Определение гемоглобина. Гемоглобинцианидный метод с применением ацетонциангидрина. Построение комбинированного графика концентрации гемоглобина в стандартном растворе. Измерение оптической плотности опытной пробы. Определение концентрации гемоглобина визуальным гемоглобинометром.
Взятие крови для подсчета эритроцитов в камере Горяева. Взятие крови для подсчета эритроцитов в пробирку, содержащую раствор хлорида натрия. Отработка точного взятия крови в объеме 0,02 мл с соблюдением правил разведения.
Освоение техники заполнения камеры. Подсчет эритроцитов в 1 мкл крови при постоянном ее разведении и определенном объеме счетной камеры
Взятие крови для подсчета лейкоцитов в камере Горяева. Отработка точного взятия крови в объеме 0,02 мл с соблюдением правил разведения. Освоение техники заполнения счетной камеры. Подсчет лейкоцитов в 1 мкл крови при постоянном ее разведении и определенном объеме счетной камеры.
Определения скорости оседания эритроцитов
Определение цветового показателя. Определение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците.
Приготовления и окраска мазков крови
Подсчет лейкоцитарной формулы. Заполнение бланка подсчета лейкоцитарной формулы.
Определения свертываемости капиллярной крови по Сухареву.
Определение группы крови и резус-фактора
Приготовление препаратов кала для микроскопии и диагностики элементов пищевого происхождения.
Обнаружение яиц гельминтов в кале. Дифференцировка гельминтов.
Руководитель производственной практики ___________/____________________
Тема лекции, беседы
Учреждение, организация, количество присутствующих
Учебно-исследовательская работа студента во время практики
Специальность: 060105 Медико-профилактическое дело Группа ___________
Практическими умениями и навыками овладел:
Знания, необходимые для выполнения практических навыков и умений, усвоил:
К порученным заданиям относился:
Добросовестно, не добросовестно
Задание УИРС: Выполнил, не выполнил
Задание по санпросвет работе: Выполнил, не выполнил
Оценка за производственную практику__________________________
Руководитель практики от организации _________________
Критерии оценки знаний, умений, полученных студентов при прохождении производственной практики.
1. Ведение дневника практики ___________________________________________
2. Отзыв руководителя практики от предприятия.
3. Тестовый контроль. Дата ____________ Результат ______________________
4. Отметка о работе в учебно-тренажерном центре.
Оценка за УИРС______________________________________
Оценка за сан-просвет. работу___________________________
ФИО и подпись руководителя практики ________________/ ___________________
Рефераты по медицине
Дневник преддипломной практики
ХАНТЫ-МАНСИЙСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ
СРЕДНЕЕ – ПРОФЕССИОНАЛЬНОЕ ОБРАЗОВАНИЕ
СПЕЦИАЛЬНОСТЬ 060110-0407 «Лабораторная диагностика»
Студента 3-го курса, группа 304-1
Место прохождения практики:
Бактериологическая лаборатория города Ханты-Мансийска
Срок практики с «19»апреля по «8»мая 2010г.
Общий: ****. главная мед сестра ОКБ
Я, *******, студент 3 курса, 304/1 группы. Отделения “Лабораторная диагностика”. Проходил практику по профилю специальности с 19.04.10 по 8.05.10 года в Бактериологической лаборатории под руководством *********.
За время практики я овладел следующими навыками:
Посев мазков из зева и носа на дифтерию (капельная группа);
Пересев мазков из зева и носа (капельная группа);
Посев содержимого женских половых органов на генитальные тест системы (капельная группа);
Посев первичного кала (кишечная группа);
Покраска мазков по грамму;
Посев содержимого женских половых органов на микрофлоре;
Посев мочи на микрофлоре;
Посев мазков из зева на микрофлоре;
Отвивка на Рессель;
Постановка короткого пёстрого биохимического ряда;
Постановка дисков на антибиотикочувствительность;
Постановка пробы на плазмокоагуляцию;
Реакция аглютинации на стекле;
Разлив сред в чашки и пробирки;
Забор смывов с операционных палат.
1 день практики-19.04.10
1. Мочу собирают в стерильную баночку и доставляют в лабораторию. Берут среднюю порцию утренней мочи после тщательного туалета наружных мочеполовых органов. Моча поступает в регистратуру. Лаборант присваивает анализу номер и передаёт мочу на посев. Берём 2 мл. мочи, переносим в пробирку с 0.5 мл среды ТТХ и убираем в термостат. Через 2 часа вытаскиваем из термостата и смотрим на цвет, если цвет изменился на красный, появилась муть, следовательно, в моче имеются микроорганизмы. Для дальнейшего исследования ставим мочу на аппарат ROBOBAKT. На следующий день при появлении роста на питательных средах врач-бактериолог учитывает результаты.
2 день практики-20.04.10
1. Материал для исследования забираем сухим стерильным тампоном. Берётся чашка с кровяным агаром, на ней ставится число и номер. Прикасаемся тампоном со всех сторон по середине чашки, затем берем петлю, обжигаем над пламенем спиртовки, остужаем и рисуем перпендикулярные штрихи по всей чашке (тампон-петля). Убираем в термостат на сутки.
2. Посев содержимого женских половых органов:
Содержимое женских половых органов забирают тампоном в стерильные пробирки и доставляем в лабораторию. Подписываем на чашке номер, присвоенный в регистратуре. Сеется на кровяной агар по методу Голда. Берём тампон и проводим всеми сторонами несколько раз по середине чашки Петри, тампон ставим обратно в пробирку. Над пламенем спиртовки обжигаем петлю и начинаем растирать нанесённый материал, не отрываясь, рисуем 40 штрихов вверх, обжигаем петлю и наносим 4 штриха поперёк предыдущего сектора. Петлю обжигаем, остужаем и наносим 4 штриха не касаясь большого сектора, поперёк первых 4 – х штрихов. Петлю обжигаем, остужаем и поперёк вторых 4 – х штрихов наносим ещё 4 штриха не доходя до сектора А.
3 день практики-21.04.10
1 Взятие исследуемого материала:
Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете, отдельно по порциям А, В, С в три стерильные пробирки, либо во время операции с помощью шприца в одну пробирку, соблюдая правила асептики. Полученные порции желчи доставляют в лабораторию не позднее 1-2 часов от момента взятия, следя за тем, чтобы пробирка находилась в строго вертикальном положении.
Посев исследуемого материала: По 0,1 мл каждой порции желчи высевают на чашку с кровяным агаром; по 0,5 мл на чашку со средой Эндо; в соотношении 1:9 в среду накопления. Для обеспечения роста анаэробов посев производят на среду для контроля стерильности. Посевы и исходный материал помещают в термостат при 37°. На второй день учитывают результаты первичных посевов. В случае бактериального роста на кровяном агаре, подсчитывают количество колоний каждого вида, пересчитывают на 1 мл исследуемого материала и после микроскопии окрашенных по Граму мазков, проводят дальнейшую идентификацию культур и определяют чувствительность к антибиотикам. При подозрении на рост анаэробных культур посевы инкубируют в анаэростате. С целью выделения сальмонелл, в последующие 3 дня делают высевы на элективные среды (Висмут-сульфит агар) как со среды накопления, так и с нативной желчи, которая в течение 3 дней выдерживается в термостате.
Если забранный материал доставлен в лабораторию сухим тампоном в пробирке, то сеем на Кровяной агар по Голду и заливаем 5 мл сахарного бульона для обогащения. Чашку ставим в термостат на сутки. Если забранный материал доставлен в лабораторию в пробирке залитый сахарным бульоном, то сеем на кровяной агар штрихами (если есть подпись на «анаэробы», то добавляем среду Шадлера, сеем методом штриха). Кровяной агар ставим в термостат, а среду Шадлера в эксикатор с газпаком.
4 день практики-22.04.10
2- покраска мазков по Граму
1.Пересев производится на Висмут-сульфит агар петлей (методом штриха). Чашку карандашом по стеклу делим пополам. В верхней части чашки пишем №,число и букву Н – нативная желчь. В нижней части букву О – среда обогащения.
2. Покраска мазков по Граму:
Мазок фиксируем 3 кратным движением над огнем спиртовки.
На стекло накладываем бумажку, пропитанную Генциан Виалет, заливаем водой на 2 мин.
Снимаем бумагу и заливаем раствором Люголя на 2 мин.
Обесцвечивать спиртом в течение 30 сек.
Смываем водой и накладываем бумагу пропитанную фуксином. Заливаем водой на 2 мин. Смываем водой и высушиваем.
2- Посев содержимого женских половых органов на генитальные тест системы.
1. Материал для исследования забираем сухим, стерильным тампоном. Отдельно из зева и из носа. Берётся чашка Клауберга, на ней ставится число и номер. Прикасаемся тампоном со всех сторон, делая площадку, отрываемся и делаем штрихи до середины чашки (нос), затем с другой стороны точно также засеваем зев. Ставим на 24-48 часов в термостат при tє 37є С.
2.Посев содержимого женских половых органов на генитальные тест системы:
Мазок берётся стерильным тампоном, в стерильную пробирку. В лаборатории пробирка с мазком заливается физ. раствором и стоит 5 минут, затем эмульгируется (т.е. перемешивается). Затем закапываем по 0,2 мл на пластинку в каждую луночку специальное масло, кроме 6. Закрываем крышкой и помещаем в термостат на 24 – 48 часов при tє 37єС.
6 день практики-24.04.10
1. Забор материала проводят из носоглотки (с задней стенки глотки), сухим стерильным тампоном, загнутым под тупым углом, язык фиксируют шпателем.
Засевается последовательно на две чашки КУА (казеиново-угольный агар) методом штриха, несколько секторов. В центре чашки тампоном производим «сброс» основной массы микроорганизмов, для получения изолированных колоний.
В агар добавляется пенициллин для подавления сопутствующей флоры.
После засева чашки помещаем в термостат с большим количеством влаги. Просмотр чашек проводят через 48- 72 часа с помощью стереомикроскопа. При отсутствии роста через 72 часа, чашки ставим в термостат ещё на 48 часов. При отсутствии роста через 5 суток выдаём окончательный результат (отрицательный).
При наличии роста колонии коклюша имеют вид- выпуклые, гладкие, ровные, блестящие края, серого цвета в виде капелек ртути.
При обнаружении коклюша делают мазок на микроскопию (красим по Граму) и ставим реакцию агглютинации с коклюшной сывороткой.
Если материал доставили в лабораторию в среде АМИЕС сеем на две чашки (с антибиотиком и без).
Сухой тампон сразу после Влажный тампон забора высевают на чашку с антибиотиком (для перемещения).
высевают 0,1 мл. втирая
Манипуляция (см. 5 день)
7 день практики-26.04.10
1.- Исследование на коклюш.
1. Манипуляция (см. 6 день)
2. Микроскопия мазков на трихомонады:
Для проведения исследования берут чистое, обезжиренное стекло, обжигаем над пламенем горелки. С помощью петли берём каплю исследуемого материала и наносим её на стекло, добавляем специальное масло и смотрим под стереомикроскопом. Отмечаем только живые, подвижные, не повреждённые трихомонады.
1.Посев ликвора, крови, носоглоточной слизи (на менингококк).
2. Посев, носоглоточной слизи (на менингококк).
1. Посев ликвора (на менингококк):
Посев осуществляют в ламинарном боксе. Ликвор сеют на среды: кровяной агар, шоколадный, сывороточный агар по 0,1мл, втирают шпателем (каждый раз новым) и оставляют на 24 часа в СО2-инкубаторе. Также делаем нативный мазок ликвора и окрашиваем методом Лёффлера и по Граму. Остатки ликвора засеваем в среду обогащения (0,1% полужидкий агар, в соотношении 4 мл. полужидкого агара + 1 мл. ликвора) Если ликвора мало в 4 мл. 0,1% полужидкого агара вносим 1 мл. сыворотки крупного рогатого скота + 0,2-0,5 мл. ликвора.
2.Посев, носоглоточной слизи (на менингококк):
Сеется на чашку сывороточного агара у постели больного, если поступает в лабораторию в среде АМИЕС, то посев проводим в лаборатории. В лабораторию чашка с посевом доставляют в грелках, сразу помещают в СО2-термостат при температуре 37 градусов.
9 день практики-28.04.10
Взятие исследуемого материала:
Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете, отдельно по порциям А, В, С в три стерильные пробирки, либо во время операции с помощью шприца в одну пробирку, соблюдая правила асептики. Полученные порции желчи доставляют в лабораторию не позднее 1-2 часов от момента взятия, следя за тем, чтобы пробирка находилась в строго вертикальном положении.
Посев исследуемого материала:
По 0,1 мл каждой порции желчи высевают на чашку с кровяным агаром; по 0,5 мл на чашку со средой Эндо; в соотношении 1:9 в среду накопления. Для обеспечения роста анаэробов посев производят на среду для контроля стерильности. Посевы и исходный материал помещают в термостат при 37 градусах. На второй день учитывают результаты первичных посевов. В случае бактериального роста на кровяном агаре, подсчитывают количество колоний каждого вида, пересчитывают на 1 мл исследуемого материала и после микроскопии окрашенных по Грамму мазков, проводят дальнейшую идентификацию культур и определяют чувствительность к антибиотикам. При подозрении на рост анаэробных культур посевы инкубируют в анаэростате. С целью выделения сальмонелл, в последующие 3 дня делают высевы на элективные среды (Висмут-сульфит агар) как со среды накопления, так и с нативной желчи, которая в течение 3 дней выдерживается в термостате.
Высев производится на Висмут-сульфит агар петлей (методом штриха). Чашку карандашом по стеклу делим пополам. В верхней части чашки пишем №,число и букву Н – нативная желчь. В нижней части букву О – среда обогащения.
11 день практики-30.04.10
1. Первичный посев кала.
1. Первичный посев кала (на бакпосев):
Посев осуществляем на 2-е плотные питательные среды: Плоскирева и Левина, а для детских посевов добавляем чашку со средой Эндо, для дальнейшего исследования на энтеропатогенные кишечные палочки. Нанесение материала начинают со среды Плоскирева, Левина, Эндо. После нанесения материала начинаем его втирать в среду шпателем. Сначала делаем площадку 1-2 см и далее не касаясь этой площадки штрихами распределяем нанесённый материал. Распределив материал по поверхности агара на одной чашке, переносим шпатель, не обжигая его, на вторую, а затем на третью чашку. Втирание шпателем начинаем со среды Эндо, Левина, Плоскирева.
При таком посеве получается рост изолированных колоний. Полученные изолированные колонии служат для пересева и получения чистой культуры изучаемого микроба. При высокой степени обсеменённости легко выявить патогенные микроорганизмы с прямого посева. После прямого посева испражнения заливаем средой обогащения (селенитовый бульон) в соотношении 1:5. Все посевы помещаем в термостат при температуре 37 градусов на 24 часа. Через сутки со среды обогащения делаем высев на дифференциально-диагностическую среду Висмут-сульфит агар (для выделения сальмонелл).
Мочу собирают в стерильную баночку и доставляют в лабораторию. Берут среднюю порцию утренней мочи после тщательного туалета наружных мочеполовых органов: мытьё кипячёной водой с мылом. 20-30 мл надосадочная часть с грушей над спиртовкой сливается в хлорамин. Осадок перемешивается и 0,5 мл переносится в пробирку, заливается селенитовой средой обогащения 4,5 мл, двойной концентрации 1:1 и прямой посев мочи на среду Эндо петлей. Ставим в термостат на сутки. На второй день пересев на среду ВСА петлей.
12 день практики-03.04.10
1.Посев кала (на псевдотуберкулез).
2.Приготовление мазков на микроскопию со среды Блаурокка для определения бифидобактерий и окраска по Граму.
1. Посев кала (на псевдотуберкулез):
Кал берется в сухую стерильную пробирку предварительно взвешенную (на пробирке указан вес) – в количестве 1 гр. с помощью алюминиевой петли. Доставляют в лабораторию не позднее 2 часов. Пробирки с испражнениями больных помещают в морозильную камеру бытового холодильника (t-10-15 градусов) на 18-24 часа. После этого пробирки переносят в холодильник при t-+6-12 градусов на 4 часа. Через 18-24 часа производят первый высев на среду Эндо. Перед посевом пробирки не взбалтывают. Посев производят бактериологической петлей штрихами. Пересевы с первичной среды накопления, если не выделилась культура, повторяют на 3, 5 и 7 день. Чашки с посевами инкубируют в термостате: со средой Эндо – при t-22-25 градусов. Посевы просматривают через 24-36 часов.
2. Приготовление мазков на микроскопию со среды Блаурокка для определения бифидобактерий:
Предметное стекло обжигаем над пламенем горелки. Со дна пробирки пипеткой набираем 0,1 мл среды, наносим на предметное стекло, при этом растирая, высушиваем на воздухе. Фиксируем 3-х кратным проведением над пламенем горелки. Красим по Грамму.
1. Посев кала количественным методом:
Кал берётся в сухую стерильную пробирку, предварительно взвешенную (на пробирке будет указан вес) – в количестве 1 гр. с помощью алюминиевой петли после естественной дефекации и доставляют в лабораторию не позднее 1 часа. Взвешиваем пробирку с калом и заливаем забуференным раствором для дизбактериоза (см. по таблице). Например: если 0,3 гр. кала, то 0,1 мл забуференного раствора. Делаем основное разведение 1:10. Из основного разведения 10-1 переносим пипеткой (каждый раз меняя пипетку) 0,1 мл материала во 2-ю пробирку, затем тщательно перемешивая из 2-й в 3-ю переносим 0,5 мл материала, из 3-й в 4-ю – 0,5 мл материала, из 4-й в 5-ю – 0,5 мл. Приготовили следующие разведения 10-3, 10-4, 10-5, 10-6. Из основного разведения 10-1 проводим посев на среды Плоскирева, Левина.
Из 10-4 – на среду желточно-солевого агара.
Из 10-5 – на среду Эндо и кровяной агар.
Из 10-6 – на среду Эндо.
Разведения сбрасываем в емкость с 3% хлорамином. Чашки и основное разведение ставим в термостат на сутки. На второй день пересев с основного разведения на среду Висмут-сульфит агар.
14 день практики-05.05.10
1.Отвивка на Рессель: Отвивка проводится для первичной идентификации энтеробактерий. Отвивка колоний, которые отмечены врачом. Прокаливаем петлю докрасна, остужаем, берём изолированную колонию и наносим её на Рессель методом “косяка”. Сначала делаем посев на “косяк”, затем прокалываем до дна. Ставим в термостат на сутки.
2. Постановка короткого пёстрого биохимического ряда:
С плотной питательной среды берём отмеченную врачом культуру (колонию) и вносим в 1 пробирку, делаем посев сначала на косяке снизу вверх, затем проколом до дна, затем пробу на индол. Во 2 и 3 пробирку делаем посев проколом до дна. Добавляем 4 пробирку с мочевиной, если лактоза негативная или лактоза позитивная (по просьбе врача). В 4 маслёну (мочевину) эмульгируем.
Рессель Гинчев 0,4% МПА Мочевина
15 день практики-06.05.10
1. Приготовление сред.
2. Разлив сред в чашки.
3. Разлив питательных сред в пробирки.
Агар с гретой кровью (шоколадный агар):
Принцип: Прогревание крови способствует освобождению из эритроцитов факторов роста Х и V необходимых для культивирования гемофилов.
Приготовление: 1)К 100 мл расплавленного и охлаждённого до 80єС питательного агара, рН 7,4, добавляют 10 мл дефибринированной крови лошади или человека (без консервантов), тщательно перемешивают, после чего помещают в водяную баню и постоянно встряхивая держат при t 70є – 80єС до тех пор пока цвет агара не станет шоколадным (25 – 30 мин).2)5 мл дефибринированной крови кролика и 100 мл питательного агара тщательно взбалтывают и ставят на 2 – 3 мин в водяную баню при 80єС. Затем добавляют ещё 5 мл крови и вновь ставят в водяную баню на 2 – 3 мин. Шоколадный агар должен иметь светло – коричневую окраску. Среду разливают в чашки Петри. Хранят не более 2 – х недель при t 4 – 6єС.
16 день практики-07.05.10
1. Смывы в операционном блоке.
2. Исследование воздуха.
1. Смывы в операционном блоке:
Смыв делают стерильным тампоном который находится в пробирки залитый 1% пептонной водой с гипосульфатом – 0,5% (для нейтрализации дез. р-ров) 4 – 5 мл.
Порядок взятия смывов:
Смывы берутся с любой поверхности площадью 10 см. После чего тампон опускают в пробирку, стараясь не задеть края пробирки. Взятая проба регистрируется и отправляется в лабораторию для дальнейших исследований.
В лаборатории смывы сеют на среду Эндо с помощью петли. С этих забранных смывов берут 0,2 мл 1% пептонной воды и вносят в среду обогащения и солевой бульон 5 мл, затем ставят в термостат на 18-24 часа при температуре 37 градусов. Через сутки делают повторный высев: с 1% пептонной воды на среду Эндо, а с солевого бульона на ЖСА (пробирки сбрасываем), чашки ставим в термостат на 18-24 часа.
Если есть рост колоний, то с материалом работает врач. Если нет колоний, то Эндо в убивку, а ЖСА ещё на 24 часа в термостат.
2.Воздух в помещениях
-седиментационный метод – основан на механическом оседании микроорганизмов.
17 день практики-08.05.10
1. Исследование воды (В санитарной группе).
2 Прием биоматериала на бак. исследования.(регистратура)
3 Выдача в отделения ОКБ стерильной посуды для забора проб. (регистратура)
4 Ведение учета выдачи, возврата лабораторной посуды(регистратура).
5 Ведение маркировки рабочих журналов, регистрация поступающих анализов. (регистратура)
6 Сортировка биоматериала по производственным группам.регистратура)
1.Санитарно-бактериологическое исследование воды:
Для исследования вода забирается из следующих источников:
колодцы различного типа;
открытые водоёмы (реки, озёра, моря);
Посев водопроводной воды:
Спиртовкой обжигаем кран, из которого будем проводить забор воды, чтобы в бутыль не попали микробы, находящиеся на поверхности крана. Затем пускаем воду, чтобы немного стекла. После чего набираем в специальный бутыль 333 мл воды. Производим посев: 1 мл воды в МПА, в чашку Петри (2 чашки).
10 мл воды в ГНС концентрированный 3 пробирки.
100 мл воды в ГНС концентрированный 3 бутылки. 1 мл воды в ГНС неконцентрированный. Ставим в термостат при температуре 37 градусов.
18 день практики-29.04.10
1. Посев кала на дизбактериоз.
1. Посев кала на дизбактериоз:
Кал забирают в сухую стерильную пробирку, предварительно взвешенную (на пробирке указан вес) – в количестве 1 грамма, с помощью алюминиевой петли после естественной дефекации и доставляют в лабораторию не позднее 1 часа.
Из 10-3 разведения сеем на чашки: Лактобациллы, Сабуро по 0,1 мл втираем шпателем досуха возле спиртовки.
Для выявления анаэробной микрофлоры делаем высев в среду Блаурокка (на дно) из разведений 10-5, 10-7, 10-9 в 2-е пробирки. В 5,7,9 по 1мл, а в 6,8,10 по 0,1 мл.